注意！ELISA試劑盒實驗操作注意事項
發(fā)布時間:2016/8/30 9:34:05 閱讀次數(shù)：817

由于 ELISA(酶聯(lián)免疫試驗)具有靈敏度較高、特異性好的特點，已廣泛應用于各種傳染性疾病的篩查如肝炎、愛滋、優(yōu)生優(yōu)育等。雖然洗板只是ELISA實驗重要環(huán)節(jié)中的一個，但作為專業(yè)的洗板機生產(chǎn)廠家，我們必須對影響ELISA實驗結果各因素有一定的認識。優(yōu)質的試劑，良好的儀器和正確的操作是保證ELISA 檢測結果準確可靠的必要條件。如不注意，就易出現(xiàn)白板、花板、色弱和假陽性等現(xiàn)象。尤其是花板現(xiàn)象(就是空白、陰性、陽性對照以及室內質控孔結果正常，而標本孔的OD值卻明顯偏高)是各個廠家洗板機調試中經(jīng)常遇到的問題。現(xiàn)將ELISA實驗操作中注意事項總結如下，以期給大家?guī)硪恍﹩l(fā)。

1 標本及采集、貯運因素

嚴重溶血，以 HRP 為標記的ELISA 測定中，殘留在孔內的血紅蛋白具有過氧化物酶樣活性，催化底物顯色造成假陽性; 混有紅細胞的血清易沉淀或附著在聚乙烯孔內不易洗凈;如有細菌污染，菌體中可能含有內源性HRP，也會產(chǎn)生假陽性反應; 標本凝固不全，有時為了爭取時間快速檢測，常在血液還未開始凝固時即強行離心分離血清，使血清中仍殘留部分纖維蛋白原，在ELISA測定過程中可以形成肉眼可見的纖維蛋白塊，易造成假陽性結果; 采血試管洗滌不徹底、反復使用易交叉污染; 塑料試管能吸附抗原物質，樣本久置在塑料管內會使樣本內抗原含量下降造成假陰性。

血清標本宜在新鮮時檢測，嚴重溶血標本禁用。一般說來，在 5 天內測定的血清標本可放置于4℃，標本在冰箱中保存時間過長導致血清IgG 聚合，使間接法的試劑本底加深。超過一周測定的需-20℃保存。凍結血清融解后，蛋白質局部濃縮，分布不均，應充分混勻并避免產(chǎn)生氣泡。混濁或有沉淀的血清標本應先離心或過濾，澄清后再檢測。反復凍融會使抗體效價跌落，所以測抗體的血清標本如需保存作多次檢測，宜少量分裝冰存;最好使用一次性玻璃試管或真空管采血管;并使用非抗凝標本，肝素抗凝血漿會增加OD值，可能與高濃度肝素具有強大的負電荷能吸附酶標記物不易洗脫有關;EDTA、酶抑制劑(如NaN3)可抑制ELISA系統(tǒng)中辣根過氧化物酶活性;血液標本采集后必須使其充分凝固后再分離血清，或標本采集時用帶分離膠的采血管或于采血管中加入適當?shù)拇倌齽?/span>

2、試劑的影響

ELISA 診斷試劑經(jīng)歷了從合成肽向基因工程抗原的過渡。由于歷史的原因，人們往往以反應本底的好壞來衡量ELISA 反應試劑盒，因此有些廠家為了保持較好的本底采用了單片段基因工程抗原及合成肽包被，該類試劑盒的流行病學敏感度不夠，穩(wěn)定性也成問題。也有廠家堅持試劑盒高的流行病學敏感度，科學地對待反應結果。基因工程抗原較合成肽抗原有無可比擬的優(yōu)越性，就HCV-ELISA 試劑盒來講，第一代產(chǎn)品為合成肽抗原，主要是HCV 特異性抗原決定簇的肽片段;第二代產(chǎn)品包被的抗原既有基因工程抗原又有合成肽，只是當時的基因工程抗原不全，僅包括了HCV 的核心區(qū)片段;第三代產(chǎn)品基本上采用了基因工程抗原，而且這些抗原包括更多、更穩(wěn)定、純度更高的HCV 特異性抗原。第三代試劑的敏感度大大提高了。基因工程抗原與合成肽抗原的區(qū)別如下：

基因工程抗原是抗原基因在質粒載體中原核或真核表達的蛋白質抗原，多以大腸桿菌或酵母菌為表達系統(tǒng)。該類抗原與合成肽相比具有以下特點：

a.分子量大。合成肽采用化學方法制備，由于工藝的局限，合成數(shù)量有限，只能達到數(shù)百個氨基酸;而利用基因工程制備的抗原，分子量更大。

b.穩(wěn)定性好。包被的抗原的穩(wěn)定性可使試劑盒的效期得到保證，早期以合成肽為包被抗原的試劑盒效期只有3-4 個月，采用基因工程抗原后效期大大延長了。

c.基因工程抗原將特異性抗原決定簇基因融合表達，表達產(chǎn)物包含更多的抗原決定簇，可提高試劑盒的靈敏度，提高檢出率。

d.純化難度大�；蚬こ炭乖募兓夹g難度較大。

合成多肽抗原是根據(jù)蛋白質抗原分子的某一抗原決定簇的氨基酸序列人工合成的多肽片段。合成肽抗原有以下特點： a.分子量太小;b.一般只含有一個抗原決定簇;c.純度高;d.穩(wěn)定性差。

國內乙肝兩對半試劑廠家較多;不同廠家出產(chǎn)的試劑靈敏度與特異性存在一定的差別，資料顯示，不同廠家試劑的特異性和敏感性分別為 89.4%—99.3%,78%—89%存在較大差異。有的廠家酶標板孔間A值差大于15%;標記酶的活性及顯色液的穩(wěn)定比較差。使用質劣的試劑必然導致結果的假陽性或假陰性。因此。選擇高質量的試劑是保證結果準確的關鍵之一。

• 選擇試劑時應選擇靈敏度高、特異性好、穩(wěn)定性好、批間差小、操作方便省時的優(yōu)良檢測試劑，國家參比實驗室每年對各廠家的試劑進行質量評估并定期公布評估結果，可作為選擇試劑的主要依據(jù)。

• 要注意試劑的批號和出廠日期，雖然試劑的有效期多為 1年。最好選擇剛出廠的試劑使用。

不同廠家的試劑不能混用。

不同方法學的檢測試劑，會使兩對半結果出現(xiàn)一些不同。例如：在實際工作中常用 ELISA檢測HBsAg結果為陰性，而電化學發(fā)光檢測為陽性。除方法學的靈敏度外;還存在使用單抗或多克隆抗體試劑的差別。單抗對變異抗原或亞型乙肝標志物檢測存在差異，建議試劑廠家對劑的制備應該考慮亞型及型濃度的問題。

3、操作技術的影響

操作過程的控制：

⑴ 嚴格按照試劑說明書進行操作。操作前將試劑在室溫下平衡30～60min。

⑵ 加樣后及時放人孵箱。標本較多時，要分批操作。按說明步驟嚴格控制操作時間，防止孵育時間人為延長，導致非特異性結合緊附于反應孔周圍，難以清洗徹底。

(3)封板溫育時，各孔一定要封嚴，防止陽性標本的液體蒸發(fā)，產(chǎn)生周邊現(xiàn)象從而導致“花板”的出現(xiàn)。

(4)用洗板機洗板時，保證洗液注滿各孔，洗板針暢通，洗完板后最好在吸水紙(選擇干凈、無或少塵的吸水材料)上輕輕拍干：還要防止針口有纖維蛋白或異物，這些異物在洗板的過程中易產(chǎn)生拖帶現(xiàn)象而導致“花板”的出現(xiàn)。

(5)合理安排檢測量，以免反應板過多造成洗板等待時間長。

(6)加酶試劑后用吸水紙在酶標板表面輕拭吸干。

(7)顯色劑盡量在臨用前配制，堅持不用過期顯色劑，肉眼可見淺藍色的TMB顯色劑不用。

(8)加樣時保持顯色劑不外流;A、B液應避免接觸金屬器械。加終止液時應避免產(chǎn)生氣泡。

(9)應保證C清潔，整個操作過程中保證酶標板不接觸次氯酸。以上的措施可以使“花板”降至最低限度。從而提高檢測的特異性。并得到更準確、可靠的實驗結果。

加樣吸嘴的潔凈與否和吸量的準確性，直接影響檢測結果。由于吸嘴構造特殊，導致清洗困難，加大了交叉污染的機會。建議用一次性吸嘴。加樣器也要經(jīng)常清洗，定期校準。加樣時應將所加物加在 ELISA 板孔的底部，避免加在孔壁上部，并注意不可濺出。

溫浴影響，在建立 ELISA 方法作反應動力學研究時，實驗表明，兩次抗原抗體反應一般在37℃經(jīng)1-2 小時，產(chǎn)物的生成可達頂峰。為避免蒸發(fā)，板上應加蓋，也可用塑料貼封紙或保鮮膜覆蓋板孔，反應板不宜疊放，以保證各板的溫度都能迅速平衡。應注意溫育的溫度和時間應按規(guī)定力求準確。由于公司的試劑盒溫育是在空氣浴中完成，采用水浴會造成值偏高或花板。另外溫育中還有邊緣效應，邊上的值會偏高，建議為了客觀的判斷結果，將質控放在非邊緣位置。96孔酶標板結構特別;易產(chǎn)生邊緣效應，抗原抗體結合及酶促反應對溫度有嚴格要求，酶標板周圍與內部孔升降溫速率不同，造成周邊與內部孔結果差異;干浴與水浴存在明顯的差異，盡可能使用水浴，并要求固相板放入水中，減少受熱不均，貼密封膜，防止污物浸入。

洗滌在 ELISA 過程中雖不是一個反應步驟，但卻決定著實驗的成敗。ELSIA 就是靠洗滌來達到分離游離的和結合的酶標記物的目的。通過洗滌以清除殘留在板孔中沒能與固相抗原或抗體結合的物質，以及在反應過程中非特異性地吸附于固相載體的干擾物質。聚苯乙烯等塑料對蛋白質的吸附是普遍性的，而在洗滌時應把這種非特異性吸附的干擾物質洗滌下來�？梢哉f在ELISA 操作中，洗滌是最主要的關鍵技術，應引起操作者的高度重視，操作者應嚴格按要求洗滌，不得馬虎。

洗滌液多為含非離子型洗滌劑的中性緩沖液，各種試劑盒的洗液不要混用。聚苯乙烯載體與蛋白質的結合是疏水性的，非離子型洗滌劑既含疏水基團，也含親水基團，其疏水基團與蛋白質的疏水基團借疏水鍵結合，從而削弱蛋白質與固相載體的結合，并借助于親水基團和水分子的結合作用，使蛋白質回復到水溶液狀態(tài)，從而脫離固相載體。洗滌液中的非離子型洗滌劑一般是吐溫20，其濃度可在0.05%-0.2%之間，高于0.2%時，可使包被在固相上的抗原或抗體解吸附而減低試驗的靈敏度。洗液需要稀釋，應按要求稀釋。配制洗液應用新鮮的和高質量的純化水，電導率小于1.5μs/cm，洗液如果結晶應待其融解后配制。手洗條件一致性較差，對結果影響較大，防止洗液在孔內形成氣泡。半自動與全自動冼板機使用不當也會影響結果，血清中殘留的的纖維蛋白絲或洗滌液析出的結晶易使洗板機針小孔全阻塞或半阻塞狀態(tài)，造成未結合標記酶洗脫不徹底，導致“花板”造成假陽性或假陰性;所以操作洗板機過程中要不時觀察洗板機針孔內洗液的通暢狀況，及時糾正，洗板機不用時應用去離子水清冼幾遍。

保證洗板浸泡時間為 40 秒左右，孔內液體被洗板機吸得越干凈洗滌效果更好，手工洗板

4.顯色和比色

TMB 經(jīng)HRP 作用后，約40 分鐘顯色達頂峰，隨即逐漸減弱，至2 小時后即可完全消退至無色。TMB 的終止液有多種，疊氮鈉和十二烷基硫酸鈉(SDS)等酶抑制劑均可使反應終止。這類終止劑尚能使藍色維持較長時間(12-24 小時)不褪，是目視判斷的良好終止劑。此外，各類酸性終止液則會使藍色轉變成黃色，此時可用特定的波長(450nm)測讀吸光值。酶標比色儀簡稱酶標儀，通常指專用于測讀ELISA 結果吸光度的光度計。酶標儀的主要性能指標有：測讀速度、讀數(shù)的準確性、重復性、精確度和可測范圍、線性等等。優(yōu)良的酶標儀的讀數(shù)一般可精確到0.001，準確性為±1%，重復性達0.5%。酶標儀不應安置在陽光或強光照射下，操作時室溫宜在15 -30℃ ，使用前先預熱儀器 15-30 分鐘，測讀結果更穩(wěn)定。

測讀 A 值時，要選用產(chǎn)物的敏感吸收峰，如OPD用492nm 波長。有的酶標儀可用雙波長式測讀，即每孔先后測讀兩次，第一次在最適波長(W1)，第二次在不敏感波長(W2)，兩次測定間不移動ELISA 板的位置，最終測得的A 值為兩者之差(W1-W2)。雙波長式測讀可減少由容器上的劃痕或指印等造成的光干擾。

肉眼判斷結果時，顯色淺不易觀察，影響結果的準確性，必須使用酶標儀檢測，以保結果一致性。

5.HooK效應影響

隨著ELISA一步法的應用，一些標本中抗原含量過高，產(chǎn)生HooK效應。影響檢測結果，采用同步稀釋測定或使用線性范圍高的兩對半定量法可以減HooK反應的發(fā)生。

6.干擾物質的影響

有人認為大約 40%的人血清標本中含有非特異性干擾物質，可以不同程度影響檢測結果;常見的干擾物質有：類風濕因子、補體、嗜異性抗體、嗜靶抗原自身抗體、醫(yī)源性誘導的抗鼠Ig (s)抗體、交叉反應物質和其它物質等。如RF因子可與標記二抗的FC段法結合造成假陽性，補體從C1q活化，使一抗和酶標二抗的抗體分子發(fā)生變構，F(xiàn)c的C1q分子結合點暴露出來，則補體C1q可將二者連接起來造成假陽性，采用56℃30分鐘滅活補體可降低假陽性率，高濃度的AFP(如孕婦)，在儲存過程中可能形成二聚體會導致本底過深影響檢測結果。

7.藥物的影響

高效價的乙肝免疫球蛋白會與 HBsAg形成復合物，影響HBsAg的檢出，所以一些HBsAg陽性患者注射乙肝免疫球蛋白后，HBsAg檢測會呈陰性反應，導致乙肝兩對半少見模式的出現(xiàn)，如我們常遇到乙肝大三陽的孕婦，為阻斷乙肝母嬰垂直傳播時，在孕第8、9、10月常規(guī)注射200mg乙肝免疫球蛋白，不僅影響孕婦HBsAg的檢出;而且其所生產(chǎn)的生新兒也常出現(xiàn)HBsAg陰性，HBeAg 陽性和HBcAb陽性等少見模式、可能是乙肝免疫球蛋白屬IgG抗體能通過胎盤進入胎兒體內與胎兒血液中的HBsAg結合形成復合物;則新生兒HBsAg檢測呈陰性;用0.5M的鹽酸處理標本1小時可提高出率。

為預防乙肝，部分 HBsAg陰性人群在接種乙肝疫苗后的1—2周內，血清中可檢出HBsAg成份，形成一過性HBsAg陽性，這可能是乙肝疫苗主要成分是HBsAg.，有方法能夠把它檢出;如電化學發(fā)光法，建議接種乙肝疫苗后1個月內不應作HBsAg檢測。

8.抗原自身因素

融合蛋白對基因工程抗原特異性的影響。以丙肝診斷試劑盒為例為例，因為包被的基因工程抗原為融合蛋白，包含了來自表達載體的一些序列可以與血清中抗大腸桿菌的因子發(fā)生反應而產(chǎn)生了可疑標本。

少數(shù) HBV感染后外周血中不含HbsAg。HBV感染后絕大多數(shù)感染者外周血中可出現(xiàn)HBsAg，含量在5ng～600μg/ml之間。據(jù)文獻報道，到目前為止在獻血員中所發(fā)現(xiàn)的HBsAg 攜帶者最低含量為0.2 ng/ml。含量高者可達2000μg/ml以上。但有少部分HBV感染者血清HBsAg測定為陰性，如暴發(fā)性乙型肝炎、HBV的S基因發(fā)生變異等。急性重癥乙型肝炎，肝細胞中以合成HBcAg為主，很少或不合成HBsAg，從而使外周血中無HBsAg。HBV的前S/S基因編碼HBsAg，構成病毒外膜，根據(jù)所帶亞型決定簇的不同分為adw、adr、ayw和ayr。a決定簇具有很高的免疫原性，在HBV的自然感染或注射HBsAg 疫苗可引起抗HBs應答。如S基因145密碼子變異使得其原來的甘氨酸被精氨酸替代時，可致a決定簇的抗原性發(fā)生改變，使機體產(chǎn)生的抗體對變異株無作用，且可引起HBV感染患者血清中同時出現(xiàn)HBsAg和抗HBs。同時乙肝疫苗接種也不能有效預防此類變異病毒的感染。乙型肝炎病毒S基因的變異有自然變異和逃避免疫變異，變異可發(fā)生在多個部位，而且?guī)滋幫蛔兛赏瑫r存在，這些變異有助于病毒攜帶狀態(tài)的持續(xù)存在。近來，有研究表明，前S1區(qū)丟失突變(氨基酸58～118)是引起HBsAg陰性的HBV感染的重要原因，S啟動子位于前S1，是合成HBsAg的調節(jié)元件，前S1的丟失突變則會影響S啟動子的功能，進而影響HBsAg的合成。

總之，優(yōu)質的試劑，良好狀態(tài)的儀器，排除各種影響因素的干擾和正確的操作是保證ELISA 檢測結果準確可靠的必要條件。

異常	結果描述	原因分析	對策
白板	顯色步驟結束后，酶標板所有孔均無顏色。陽性對照不顯色。	試劑已過效期，或不同試劑盒組分混用	檢查試劑的組分及批號，確認未過期以及所有組分均屬對應的試劑盒。不同試劑盒或不同批號的試劑不能混用。
		錯加、漏加試劑底物、顯色劑 A或B	嚴格按說明書的步驟操作，加完試劑后可觀察一下液面高度是否一致，以減少漏加現(xiàn)象。
		洗板及加樣過程中，酶標受污染失活失去催化顯色劑顯色的能力	確認盛酶標的容器不含酶抑制劑如疊氮鈉等，確認配制洗液的容器已洗干凈。
		終止液誤作洗滌液稀釋或當?shù)孜锞彌_液配制	每次配制時都應看清標簽標明物質。
		蒸餾水有問題	確認配制洗液的純化水達到要求且未污染，與好蒸餾水比較。
顯色弱、靈敏度低	實驗結束后，包括陽性對照、質控在內的所有板孔顏色均較淡。	試劑盒超過期，超過有效期的產(chǎn)品可能會產(chǎn)生很弱的信號；試劑盒沒有按規(guī)定進行保存，受高溫影響；	實驗前檢查試劑的組分及批號，確認試劑未過期。不要將試劑盒長時間置于常溫下，按使用規(guī)定儲藏。
		試劑、樣品用前未平衡至室溫	從低溫冰箱中取出的試劑及樣品應置室溫平衡 20分鐘左右。
		加入試劑的體積和時間有誤，移液器計量不準，吸嘴內水分太多或不清潔；	確定所使用的試劑體積正確，加入時間適當。校正移液器，移液器與吸嘴配合要緊密吻合。移液不宜太快，排放應完全。
		洗板及加樣過程中，酶標受污染失活而失去催化顯色劑顯色的能力；	確認盛酶標的容器不含酶抑制劑如疊氮鈉等，確認配制洗液的容器已洗干凈，確認配制洗液的純化水達到要求且未受污染。
		孵育時間及孵育溫度未達到要求，反應板放入培養(yǎng)箱時注意溫度并及時調整。	孵育溫度應控制在 37-38℃，孵育時間嚴格按照說明書操作。保溫期內不宜多開門，以免影響保溫。
		洗板次數(shù)過多，或濃縮洗液稀釋倍數(shù)不符合要求；洗滌沖擊力太大。浸泡時間太長；	嚴格按說明書要求稀釋濃縮洗液及洗板，減小洗滌沖擊力，按說明書要求置留洗滌液時間和洗滌次數(shù)。
		顯色劑加量不足或順序顛倒，或混合后加入；	顯色劑滴瓶垂直向下，持力均勻，滴速不宜過快，先加顯色劑 A，后加顯色劑B，不可將A、B液混合后加入。
		底物作用時間不夠；	準確定時。
		蒸餾水水質有問題；	測定蒸餾水配制試劑對酶免疫法的影響。
	實驗結束后，陰陽性對照正常，質控正常，但臨床標本感覺顯色較弱	待測標本中可能不含強陽性標本，故結果可能是正常的	如有懷疑，可復檢
	實驗結束后，陰陽性對照正常，質控正常，但臨床標本感覺顯色較弱	標本加入疊氮鈉作為防腐劑	酶免實驗中的標本禁用疊氮鈉作為防腐劑，可選用 proclin、硫柳汞等其他防腐劑
	陰陽性對照正常，但質控、參考品或個別弱陽性標本未能檢出。	未達要求的孵育溫度及孵育時間可檢出強陽性標本，但質控或弱陽性標本受溫度變化影響較大而被未檢出。	確認孵育的溫度及孵育時間達到要求。
		質控品或標本高溫放置過久，或被反復凍融致待測物滴度下降，而未能檢出	質控品或標本避免反復凍融。標本在一周內使用的，可存于 2-8℃，如需長期保存，應置于-20℃以下保存。質控品應小量分裝，并置于-20℃以下保存。
		儀器設定不正確，濾光片不匹配。	重新設定酶標儀的參數(shù)，特別是檢查濾光片是否匹配。
	終止后，目測結果正常，但酶標儀讀值結果偏低	酶標儀參數(shù)設定不正確。	重新設定酶標儀的參數(shù)，特別是檢查濾光片是否匹配。
靈敏度過高、板底高、高背景	終止后，整板結果顯現(xiàn)均一的黃色或淡黃色；或陰陽性對照、質控正常，標本陰性標本 OD值過高。	整板的黃板現(xiàn)象可能是由于錯加其他試劑造成，如同時操作兩對半試劑時，測 HbsAb板用于測HBsAg等；	實驗前檢查試劑的組分及批號，確認所有組分均屬于對應的試劑盒。不同試劑盒或不同批號的試劑不能混用。
		酶標對吸頭的污染以及對盛放顯色劑容器的污染都易造成黃板現(xiàn)象；	避免試劑組分間的交叉污染，確保吸頭、容器的干凈。
		顯色劑在光照條件下放置過久，實驗前已變藍	顯色劑 A、B未使用前避光保存
		孵育溫度過高或孵育時間過長；	孵育溫度應控制在 37-38℃，孵育時間嚴格按照說明書操作。
		未按要求洗板。特別是洗滌時每孔未注滿洗液，易造成花板黃板現(xiàn)象	嚴格按說明書要求洗板。
		花板，一般是由于臨床標本的收集、處理和保存方法不當造成	放置時間（自然放置 1~2h）及離心轉速（3000r/min）、離心時間（15min）應引起注意。
	出現(xiàn)隨機性的花板、跳孔現(xiàn)象	樣品離心不完全，反應孔內發(fā)生凝血或殘留細胞成分；	充分離心， 3000rpm6分鐘以上。
		加樣時交叉污染；	加標本時盡量避免交叉污染。如盛標本的試管周圍常有血痂，易脫落，應遠離酶標板。
		手工洗板造成的交叉污染	手工洗板時前 3次注洗液后應立即棄去，后幾次再設定浸泡時間，可減少交叉污染
		洗板機加液頭堵塞導致加液不滿或吸液殘留量較大，造成花板、跳孔	疏通加液頭，使洗板時每孔均注滿洗液，吸液時殘留量要小。
		拍板時交叉污染	洗板完畢拍板時用合適的吸水紙巾，不要把無關物質拍進板孔，并盡量不要在同位置拍，以免交叉污染。
假陽性	假陽性現(xiàn)象是一個綜合現(xiàn)象，可參考上文 “靈敏度過高、板底高、高背景” 中的分析。這里只列舉常見的原因及對策。	計算 Cutoff值時使用的公式不正確，導致計算得出的CutOff值過低，從而導致出現(xiàn)假陽性	CutOff值計算公式應嚴格參照所屬產(chǎn)品的說明書，應注意各個酶免產(chǎn)品的Cutoff值計算公式不盡相同。
		洗板時未能注滿洗液或洗板次數(shù)、浸泡時間不夠，洗滌不充分，樣品中有其他成分殘留導致花板、跳孔，假陽性增多	嚴格按說明書要求洗板。調整洗板機時，應注意有時儀器標示的液量與實際液量并不相符，應根據(jù)實際情況調整至每孔注滿。
		血清標本處理不當，如未除去細胞成分、纖維蛋白原及其它干擾物可出現(xiàn)孔底由變藍的跳孔現(xiàn)象，此標本重復實驗結果往往是陰性；	放置時間（自然放置 1~2h）及離心轉速（3000r/min）、離心時間（15min）應引起注意。
		廠家試劑質量的變化造成；	國家標準要求提高靈敏度時，廠家試劑靈敏度也相應提高，假陽率常常有所上升，但只要在合理范圍，是可以接受的。
		水質問題；	防止蒸餾水污染。
		加酶量過多（如 50uL誤認為100uL）或丙肝酶稀釋時加量過多；	加酶前檢查移液器調節(jié)量是否準確，稀釋酶時思想要集中。
		培養(yǎng)箱溫度超過 37℃或酶結合物反應時間或底物顯色時間超過；	放入板以前要檢查培養(yǎng)箱的溫度，準確定時。
		底物配制時間過長、或底物污染；	底物應在酶反應完畢即將洗滌前 5分鐘配制，注意避光。
		該批樣品放置時間過長，樣品污染；	樣品應保持新鮮，或低溫保存，防止污染。
		移液嘴重復使用，未洗凈或消毒不完全而用于加酶或底物；	移液嘴盡可能一次性使用。
重復性差		1、樣品數(shù)量不一，加樣時間長短不一；	重復某一樣品時，加樣時間盡可能與第一次接近。
		2、樣品加入后未混勻；	加樣后在混勻器上充分混勻。
		3、酶標儀濾光片不對或輸入波長不對；	TMB顯色用450/630波長.
		4、酶標儀測定重復性差；	校對酶標儀。
		5、洗滌不正確；	洗滌液注滿各孔但不要溢出。洗板時反應板面向下，垂直用力甩凈內容物（可多甩幾次），在干凈、無或少塵的吸水材料上拍干。洗板機洗板時不應有堵孔，洗滌應充分。
		6、溫育條件不一致（一次用水育，一次用恒溫箱）	恒溫箱溫育較水浴顯色深， OD值高出0.1-0.15,最好均采用恒溫箱.如用水浴水溫應控制在37℃。
		7、不慎多加或少加酶或顯色劑；	多加時顯色深，少加則淺，用記號筆圈上，便于分析。
		8、閾值附近時陰時陽；	同一樣品做三個復孔，以二個（含二個以上相同結果為準）
		9、加樣量不足、保溫時間、洗滌條件一致；	盡可能使用同一移液器和裝緊吸嘴重復測定標本。條件、人員等應盡量與上次保持一致。

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